به جمع مشترکان مگیران بپیوندید!

تنها با پرداخت 70 هزارتومان حق اشتراک سالانه به متن مقالات دسترسی داشته باشید و 100 مقاله را بدون هزینه دیگری دریافت کنید.

برای پرداخت حق اشتراک اگر عضو هستید وارد شوید در غیر این صورت حساب کاربری جدید ایجاد کنید

عضویت

جستجوی مقالات مرتبط با کلیدواژه "Transgenic Plants" در نشریات گروه "زراعت"

تکرار جستجوی کلیدواژه «Transgenic Plants» در نشریات گروه «کشاورزی»
جستجوی Transgenic Plants در مقالات مجلات علمی
  • احد باقری، علیرضا عباسی*، حسن زینالی خانقاه، ولی الله محمدی

    بیماری ساق سیاه که توسط قارچ Leptosphaeria maculans ایجاد می شود، تولید کلزا را در ایران و جهان، به شدت تحت تاثیر قرار می دهد. در این پژوهش، سه ژن PR10.1، Chitinase و DRR206 از نخود فرنگی (Pisum sativum) به کلزا منتقل شد و کارایی آن ها در ایجاد مقاومت به بیماری ساق سیاه در قالب دو آزمایش، مورد بررسی قرار گرفت. در آزمایش اول، سه تراژن از لاین تراریخت Wester کلزا، از طریق آمیزش برگشتی، به چهار رقم زراعی Sentry، OAC Triton، Apollo وMillenniUM 03 منتقل شدند و تاثیر پس زمینه ژنتیکی سه رقم مختلف بر پاسخ به بیماری، بررسی شد در آزمایش دوم و جهت مطالعه تاثیر تجمیع دو به دوی تراژن ها بر سطح مقاومت، لاین های مختلف وستار تراریخت با یکدیگر آمیزش داده شدند. غربالگری گلخانه ای بیماری ساق سیاه به روش مایه زنی لپه صورت گرفت. تراژن DRR206 در رقم Sentry و ترکیب دو تراژن Chitinase×DRR206، بالاترین مقاومت را ایجاد کرد. به طورکلی تراژن DRR206، بهترین عملکرد را در کاهش بیماری داشت که به نظر می رسد، این تاثیر از طریق به تاخیر انداختن مراحل اولیه توسعه بیماری صورت می گرفت. لاین های امیدبخش حاصل از این پژوهش، پس از آزمایش های مزرعه ای، قابلیت به کارگیری در برنامه های به نژادی آزادسازی رقم را خواهند داشت.

    کلید واژگان: تراریخت, ساق سیاه, کلزا, نخود فرنگی, PR10.1, chitinase, DRR206
    Ahad Baghery, Alireza Abbasi *, Hasan Zeinali Khanghah, Valiollah Mohammadi

    Blackleg caused by Leptosphaeria maculans is one of the important diseases widely affecting canola production worldwide. Effectiveness of three plant defence related genes transferred from pea (Pisum sativum) to canola was tested against blackleg in two experiments. In the first experiment, three transgenes including PR10.1, Chitinase, and DRR206 were transferred from transgenic Wester variety into four commercial cultivars (Apollo, Sentry, OAC Triton, and MillenniUM 03) via backcrossing to examine the effects of different genetic backgrounds on disease response. In the second experiment, to study the effect of gene pyramiding on level of disease resistance, three transgenic Wester lines were crossed. Cotyledon inoculation was performed for indoor disease screening tests of blackleg. DRR206 in Sentry and Chitinase×DRR206 appeared to be the best combinations conferring disease resistance. Overall, DRR206 had the highest impact on disease, probably due to delayed infection development. Promising lines of this research could be utilized in breeding programs and cultivar release projects after field trials.

    Keywords: chitinase, Disease Screening, DRR206, PR10.1, Transgenic Plants
  • عباس نامنی، علیرضا عباسی*، منیژه سبک دست نودهی
    تنش خشکی یکی از مخرب ترین تنش های غیر زنده محسوب می شود. اکسپنسین ها پروتئین های بسط دهنده دیواره سلولی هستند که قادرند دیواره سلولی را تحت روشی که وابسته به pH می باشد، گسترش دهند. در این مطالعه نسل دوم (T2) گیاهان توتون تراریخت شده با ژن AtEXPA1 در سه لاین تراریخته 2، 4 و 7 و رقم تجاری سامسون به عنوان شاهد از نظر برخی صفات فیزیولوژیکی و بیوشیمیایی تحت تنش خشکی بررسی شدند. تنش خشکی باعث کاهش صفات محتوای نسبی آب برگ (RWCL) و میزان کلروفیل برگ و همچنین افزایش صفات شاخص هدایت الکتریکی برگ (ELIL)، پراکسیداسیون لیپیدهای غشایی برگ (MDAL) و میزان پرولین برگ شد. با اعمال تنش و افزایش سطوح تنشی، میزان فعالیت آنزیم های کاتالاز (CAT)، گایاکول پراکسیداز (GPOX)، آسکوربات پراکسیداز (APOX) و پلی فنل اکسیداز (PPO) در برگ افزایش یافت. در این مطالعه بر اساس صفات بیوشیمیایی، لاین 2 و 7 و بر اساس صفات فیزیولوژیکی، لاین 4 در مقایسه با رقم شاهد توانسته اند با تنش مقابله کنند و نسبت به تنش خشکی رقم متحمل محسوب شوند.
    کلید واژگان: اکسپنسین, بسط دیواره سلولی, گیاهان تراریخت, تنش خشکی, AtEXPA1
    Abbas Nameni, Alireza Abbasi *, Manizhe Sabokdast
    Drought stress is one of the most destructive abiotic stresses. Expansins are one of the cell wall expandable proteins that can expand the cell wall under a pH-dependent pathway. Stomatal opening rate Due to the expression of AtEXPA1 gene in transgenic plants has been observed. In this study, second generation (T2) of three transgenic tobacco lines with AtEXPA1 gene were studied for some physiological and biochemical traits under drought stress. Transgenic lines includes 2, 4 and 7 and Non-transgenic commercial cultivar Samson as control were cultivated. RWCL and leaf chlorophyll content has been reduced under drought stress, and ELIL, Lipid peroxidation as MDAL and leaf proline content has been increase. The activity of antioxidant enzymes such as, catalase (CAT), guaiacol peroxidase (GPOX), ascorbate peroxidase (APOX) and polyphenol oxidase (PPO) was increased in leaves under drought stress. In this study, according to biochemical traits Line 2 and Line 7 and according to physiological traits Line4 in Compared to the control cultivar, could cope with stress and introduce as tolerate cultivars.
    Keywords: AtEXPA1, cell wall expansion, Drought stress, Expansin, transgenic plants
  • محمد مهدی سوهانی*
    امروزه پیشرفت های زیادی در به نژادی گیاهان زراعی با استفاده از ابزار مهندسی ژنتیک به دست آمده به طوری که سطح زیرکشت گیاهان تغییریافته ژنتیکی (Genetically modified=GM) در 20 سال گذشته در نقاط مختلف دنیا افزایش قابل توجه ای یافته است.با وجود مزایای زراعی و اقتصادی و تاثیرات مفید غیرقابل انکار آنها بر محیط و سلامتی انسان، شک و تردید جامعه و مصرف کنندگان نسبت به گیاهان GMسبب شده است تا اجرا، بهره برداری و تجاری سازی آن ها و به عبارتی کاربرد تکنیک هایمولکولی در بسیاری از گیاهان زراعی متوقف شود.این امر عمدتا به سبب ورود ژن های نشانگر انتخابی با منشا باکتریایی به ژنوم گیاه میزبان و نیز مرتبط با آثار سوء احتمالی انتقال عناصر ژنتیکی بین گیاهانی است که در طبیعت معمولا غیرقابل تلاقی هستند. اولین مرحله در اجرای این هدف، طراحی یک ناقلDNA  ویژه برای هر گیاه زراعی است به گونه ای که منطقه T-DNA آن فقط از عناصر ژنتیکی همان گیاه و یا خویشاوندان نزدیک ژنتیکی آن به دست آمده باشد که در این صورت می تواند پذیرش مصرف کنندگان را به همراه داشته باشد. از مهم ترین عناصر، پروموتر، ترمیناتور، مرزهای تکراری چپ و راست T-DNA و غیره است که باید با انواع گیاهی جایگزین شود. در اغلب موارد استفاده از ژن هاینشانگر که منشا باکتریایی دارند باید اجتناب شود یاپس از تولید و ایزوله کردن گیاه تراریخت، از گیاه هدف به روش های مختلف حذف شوند. در این مقاله،مفهوم رهیافت های سیس ژنیک یا اینتراژنیکبرای به نژادی گیاهان و نکات علمی و فنی برای طراحی وکتورهای گیاهی به طور خلاصه بررسی و ارایه شده است.
    کلید واژگان: انتقال ژن, بدنه ناقل, حذف نشانگر انتخابی, گیاهان تغییریافته ژنتیکی
    Mohammad Mehdi Sohani *
    The area under cultivation of genetically modified (GM) crops hasincreased dramatically within the last 20 years. In spite of the economic/agronomic benefits, and their undeniable effects on the environment and human health, social rejection towards GM food, has hindered implementation, exploitation, and commercialization of the molecular techniques. It is chiefly due to the introduction of prokaryotic genes as a selectable marker and transgene from sources that are not naturally crossable with target crop. Using a plant-derived DNA transformation vectors specially designed for each crop with genetic elements from its own genome should rise less environmental concern and may increase consumer’s acceptance. The promoter, terminator, T-DNA borders, etc. remain the prime genetic elements within T-DNA region that need to be replaced with plant-derived types. In addition, putative right border should be designed and selectable marker gene need to be avoided or removed following production of a transgenic plant.In the current paper, the concept of cisgenic and intragenic approaches for plant improvement and the essential technical points need to be considered when designing a plant-derived vector are briefly reviewed.
    Keywords: Gene transfer, Selectable marker removal, Transgenic plants, Vector backbone
  • احد باقری *، علیرضا عباسی، محسن زینالی، ولی الله محمدی
    یکی از بیماری های مخرب کلزا در دنیا، پوسیدگی اسکروتینیائی ساقه ناشی از قارچ (Sclerotinia scleritiorum) است. اطلاعات کمی در مورد مقاومت به این بیماری در دست است. در این تحقیق، تاثیر سه ژن مربوط به مقاومت به بیماری که از گیاه نخودفرنگی منشا گرفته و به کلزا منتقل شده اند علیه بیماری پوسیدگی ساقه با استفاده از سه ترانس ژن (Transgene) PR10.1، Chitinase و DRR206 در قالب دو آزمایش بررسی شد. در آزمایش اول سه ترانس ژن از رقم کلزای حامل آن ها (رقم Westar) به چهار رقم تجاری MillenniUM 03، Apollo، Sentry و OAC Triton منتقل شدند تا تاثیر پس زمینه های مختلف ژنتیکی پاسخ به بیماری بررسی شود. این کار از طریق تلاقی ارقام تجاری با لاین های تراریخته، و به دنبال آن تلاقی های برگشتی با ارقام تجاری انجام شد. در آزمایش دوم، ایده تجمیع دو به دوی ترانس ژن های سه گانه آزمون شد. برای این منظور تلاقی معمولی بین لاین های تراریخته Westar برای ترکیب های مختلف بین ترانس ژن ها انجام شد. برای غربالگری گلخانه ای بیماری از سه روش آزمون ساقه، مایه زنی دمبرگ و سنجش برگ استفاده شد. بر اساس نتایج آزمون های غربالگری، در آزمایش اول بهترین کاهش بیماری در ترکیب ترانس ژن PR10.1 در ارقام Sentry و Apollo مشاهده شد و در آزمایش دوم ترکیب PR10.1×DRR206 بهترین میانگین را داشت. در مجموع ترانس ژن PR10.1 بهترین عملکرد را در کاهش بیماری داشت. لاین های نویدبخش فوق الذکر را می توان در شرایط مزرعه ای نیز آزمون کرد تا در صورت تائید، به ثبت و تجاری سازی آنها منتهی می شود
    کلید واژگان: بیماری پوسیدگی اسکلروتینیائی کلزا, گیاهان تراریخته, PR10, 1, chitinase, DRR206, بیماری سنجی گلخانه ای
    A. Baghery *, A. Abbasi, H. Zeinali, V. Mohammadi
    Sclerotinia stem rot caused by Scelrotinia sclerotiorum is one of the devastating diseases of colza (canola) worldwide. Less information is available about the resistance to this disease. Effectiveness of three disease related genes originated from pea and transferred to colza against Sclerotinia was investigated in this study using three Westar cv. transgenes PR10.1, Chitinase, and DRR206. The research was carried out in two experiments. Experiment one tried to transfer the three transgenes to four commercial cultivars Apollo, Sentry, OAC Triton and MillenniUM 03 in order to examine the effects of different genetic backgrounds on disease response. This was accomplished by crossing the commercial cultivars and the transgenic lines followed by repeated backcrosses with the commercial cultivars. In experiment two the idea of pyramiding the three transgenes two-by-two was tested. A regular cross between Westar transgenic lines was done for different transgene combinations. Three different tests: stem test, petiole inoculation technique and detached leaf assay were used for indoor disease screening. The Based on the results of disease screening, in experiment one, the best disease reduction was observed in PR10.1 in Sentry and Apollo combinations. In experiment two, PR10.1 × DRR206 combination showed the best average. Overally, PR10.1 had the best yield in decreasing the diseases. The promising lines mentioned above can be tested in field trials leading to their registration and commercialization.
    Keywords: Canola sclerotinia stem rot, PR10.1, chitinase, DRR206, transgenic plants, disease screening
  • فاطمه ذاکر تولایی، بهزاد قره یاضی، عبدالرضا باقری، کایران کمار شارما
    عدس از جمله حبوبات مهم در ایران است که با توجه به وقوع تنش های مختلف در مناطق موردکشت ، اصلاح آن جهت افزایش تحمل به تنش های محیطی و از جمله تنش های غیرزیستی نظیر سرما و یخ زدگی اهمیت زیادی دارد. این پژوهش با هدف انتقال ژن codA به عدس، به منظور افزایش تحمل گیاه به تنش های غیرزیستی از جمله سرما انجام شد. اثر مثبت انتقال این ژن، افزایش تحمل به تنش سرما، قبلا در برخی از گیاهان دیگر نظیرآرابیدوپسیس و برنج گزارش شده است. در مطالعات قبلی نگارنده، بهینه سازی، باززایی و انتقال ژن به عدس انجام گرفته است. در این مطالعه با استفاده از یافته های دو مطالعه ی قبلی، ژن codA با هدف افزایش تحمل به تنش های غیرزیستی، به ویژه سرما، به عدس منتقل شد. حضور ژن codA در گیاهان تراریخته T0 با استفاده از PCR و همچنین تلفیق ژن در ژنوم نیز با استفاده از دات بلاتینگ و سادرن بلاتینگ تایید شد. رونویسی از ژن نیز با کمک تکنیک RT-PCR تایید گردید. پس از حصول گیاهان T1، تراریخته بودن آن ها نیز با استفاده از PCR و RT-PCR موردتایید قرار گرفت.
    کلید واژگان: باززایی, تراریخته, ژن codA, عدس ((Lens culinaris M
    Fatemeh Zaker Tavallaie, Behzad Ghareyazie, Abdorreza Bagheri, Kiran Komar Sharma
    Introduction Lentil is an important pulse crop in Iran. Lentil is a seed propagating, self-pollinating crop originating from Near East. It is containing 27.5% -31.75% protein and it has high level of iron, calcium, phosphor, thiamin, niacin, and some unusual amino acid as hydroxyarnitin, hydroxyarginin and homo arginin. FAOSTAT reported that the world production of lentils was 4,975,621 metric tons in 2013. Major producing countries are India, Australia, Canada and Turkey. According to Iranian agricultural statistic (2014), area of pulses cultivation estimated 770000 hectares and its 20.2% belong to Lentil. Important abiotic stresses that affect lentil are cold, freezing, drought, heat and salinity. Highland and cold temperatures areas are the main producer in Iran and production of lentil in these areasis limited. So we need tolerant cultivars against cold and freezing stresses for sowing during autumn.Glycine betaine (GB) accumulates in some plants under abiotic stress such as cold. GB stabilizes the structures and activities of enzymes and protein complexes and maintains the integrity of membranes against the damaging effects of excessive salt, cold, heat and freezing. The codA gene from Arthrobacter globiformis bacteria encodes choline oxidase enzyme that catalyzes synthesis of glycine betaine from choline. The efficiency of biotechnology techniques, especially tissue culture and gene transformation is noticeable in this aspect. The objective of this research is gene transformation of lentil using codA gene to enhance its tolerance against abiotic stress especially cold tolerance.
    Materials and MethodsSeeds of lentil (Lens culinaris Medik) variety of Gachsaran (ILL6212) collected from Shiravan Agriculture Research center in Iran were used in this investigation.
    Gene transformation of lentil was done using pChlCOD plasmid. This plasmid is containing codA gene.Gene transformation was done by Agrobacterium tumefaciens using Cotyledon with slight part of Embryo Axes explant after shooting for cu-cultivation. Co-cultivation and following selection and regeneration was done according to Zaker Tavallaieet al, (2011) protocol. The plasmid was containing one intron of rice that it eliminated before cu-cultivation. Three weeks after transferring seedling to glasshouse DNA was extracted from leaves samples using modified CTAB protocol. Existence of codA gene was investigated by PCR reaction using codA-4 and codA-5 primers. Putative transgenic plants were verified by dot blotting also. To determine integration of the gene into transgenic lentil southern blotting also was done. RT-PCR after RNA extraction from leaves sample from mature plants was done to investigate transcription of codA gene. We collected some seeds from putative transgenic plants and after cultivation in glasshouse T1 plants were obtained. PCR, RT-PCR experiments on investigate existence of codA gene and dot blotting was done on T1 transgenic plant.
    Results and DiscussionThe existence of codA gene into T0 putative transgenic plants was confirmed by PCR and dot blotting.Integration of codA gene into genome was revealed by Southern blotting and transcription of the gene confirmed by RT-PCR assay, respectively. The existence of gene into T1 plants and its transcription was also confirmed using PCR and RT-PCR. Considering the availability transgenic seeds, it is possible to perform further bioassay experiments regarding to enhancement of tolerance of transgenic plants against abiotic stress especially cold stress.
    ConclusionGene transformation of lentil by Agrobacterium using codA gene was achieved successfully. After co-cultivation, regeneration of transgenic shoots including shoot induction, shoot elongation, root induction, hardening and growth in glasshouse to rich to mature plants was done successfully according to Zaker Tavallaie et al, (2011) protocol. Hygromycine was used as selection agent in selection media. T0 transgenic plants verified using PCR, Dot blotting, Southern blotting and RT-PCR. T1 transgenic plants also confirmed by PCR and RT-PCR. It is necessary to achieve all bio assays about tolerance of transgenic plants against abiotic stress. Also we will investigate inheritance of treat in following generation of T1 plants. Also we will do other necessary investigation such as biosafety experiments. We hope the transgenic plants will be tolerant against abiotic stresses such as cold and freezing.
    Keywords: CodA gene, Lentil (Lens culinarisM.), Regeneration, Transgenic plants
  • G. H. Chen, W. Yan, S. P. Yang, A. Wang, J. Y. Gai, Y. L. Zhu
    Low phosphorous (P) availability in soils limits production of soybean [Glycine max (L.) Merr.] around the world. This study was conducted to determine whether exogenous expression of the rice (Oryza sativa L.) phosphates transporter gene OsPT2 would increase inorganic phosphates (Pi) acquisition and improve yield in transgenic soybean. Cotyledonary-node explants of the soybean were inoculated with the Agrobacterium tumefaciens strain EHA105 harboring the vector pCAMBIA3301-OsPT2, which contained OsPT2, gus and bar genes. Ten fertile T0 transgenic plants were obtained and semi-quantitative RT-PCR of progenies demonstrated that OsPT2 gene was overexpressing in the T2 generation. Three T2 transgenic lines overexpressing OsPT2 were selected and subjected to testing for tolerance to low concentrations of Pi (low-Pi; 20 μM Pi) by hydroponic culture using modified Hoagland’s nutrient solution. The total P contents in the leaves, stems, roots, and seeds of the transgenic plants significantly increased under the concentrations of low-Pi and 1,000 μM Pi of standard Hoagland’s nutrient solution. Under low-Pi stress, the yields of the transgenic lines were significantly higher than those of the wild type. Taken together, our data suggest that the overexpression of OsPT2 in transgenic soybean lines improves Pi acquisition and seed yield, and OsPT2 may serve as one of the promising target genes that can be manipulated in crop improvement for minor use of Pi fertilizers.
    Keywords: Glycine max, Transgenic plants
  • سوده دشتی، علی اکبر حبشی، حمید عبدالهی، محمد چمنی، مریم جعفرخانی کرمانی
    امروزه استفاده از روش های مهندسی ژنتیک توانسته است ضمن کوتاه کردن دوره طولانی اصلاح درختان میوه، این برنامه ها را هدفمندتر کند. منظور از اجرای این تحقیق، بهینه سازی و بررسی عوامل موثر بر انتقال ژن با استفاده از Agrobacterium tumefacience به دو رقم گلابی بارتلت (Bartlett) و هرو دیلایت (Harrow Delight) بود. در همین راستا، دو ریزنمونه برگی و مریستم جوانه جانبی با استفاده از اگروباکتریوم سویه EHA101 دارای ناقل دوتایی pBI121 شامل ژن های nptII و gus تلقیح شدند. عوامل موثر بر باززایی گیاهان تراریخت و فعالیت ژن gus که در این مطالعه بررسی شدند شامل غلظت باکتری مورد استفاده در تلقیح با دو تیمار OD600 (2/0 و 6/0)، غلظت استوسرینگون (μmol 100 و μmol250)، پلورونیک F-68 (صفر و 02/0%) و مدت زمان هم کشتی (24، 72 و 120 ساعت) بودند. نتایج نشان داد که رقم گلابی بارتلت از نظر باززایی و بیان ژن gus موفق تر از رقم هرو دیلایت است. هم چنین ریزنمونه جوانه جانبی جایگزین مناسبی برای ریزنمونه برگی شناخته شد. نتایج بهینه سازی عوامل مورد بررسی در این آزمایش نشان داد که در هر دو ریزنمونه، استفاده از غلظت کمتر باکتری باعث افزایش کارآیی انتقال ژن می شود. از سوی دیگر، استفاده از 250 میکرومول استوسرینگون می تواند بر انتقال ژن به هر دو ریزنمونه اثر مثبتی داشته باشد. در این بهینه سازی، حضور پلورونیک به عنوان یک ماده روکنش گر موثر شناخته شد. در بین مدت زمان های هم کشتی، کوتاه ترین تیمار (24 ساعت) بیشترین میزان انتقال ژن را نشان داد. تایید انتقال ژن به ژنوم گیاهان تراریخته به وسیله آزمون شیمی سلولی GUS، واکنش زنجیره ای پلیمراز (PCR) و هم چنین لکه گذاری نقطه ای (Dot Blot) و لکه گذاری سادرن (Southern Blot) انجام شد.
    کلید واژگان: مهندسی ژنتیک, باززایی, گیاهان تراریخت
    S. Dashti, A. A. Habashi, H. Abdollahi, M. Chamani, M. Jafarkhani Kermani
    Nowadays, genetic engineering methods are able to reduce the time of breeding programs for improvement of fruit trees, as well as offering a focused breeding system. The purpose of the present investigation was to study the factors that affect Agrobacterium tumefacience mediated transformation of two pear cultivars: Bartlett and Harrow Delight. Two explants (leaves and axillary shoot meristems) were inoculated with Agrobacterium strain EHA101 harboring the binary vector pBI121 carrying the nptII and gus genes. Factors that effected the regeneration and gus gene expression were bacterial density OD600 (0.2 and 0.6), acetosyringone concentration (100 µM and 250 µM), usage of pluronic F-68 (0% and 0.02%) and co-cultivation time (24, 72 and 120 hours). The results showed that transformation of Bartlett cultivar was more successful than Harrow Delight cultivar. Also, axillary shoot meristem was a good substitute for leaf explant. Results of the optimization of investigated factors showed that in both explants, low concentration of bacteria increased the rate of gene transformation. On the other hand, applying 250 µM acetosyringone could have positive effect on gene transformation in both explants. In this optimization process, pluronic F-68 was recognized as an effective surfactant. Regarding duration of co-cultivation, the shortest treatment (24 hours) showed the highest amount of gene transformation. Expression, presence and integration of transgenic plants were confirmed by histochemical GUS assay, polymerase chain reaction, dot blot and southern blot hybridization.
    Keywords: Genetic engineering, Regeneration, Transgenic plants
نکته
  • نتایج بر اساس تاریخ انتشار مرتب شده‌اند.
  • کلیدواژه مورد نظر شما تنها در فیلد کلیدواژگان مقالات جستجو شده‌است. به منظور حذف نتایج غیر مرتبط، جستجو تنها در مقالات مجلاتی انجام شده که با مجله ماخذ هم موضوع هستند.
  • در صورتی که می‌خواهید جستجو را در همه موضوعات و با شرایط دیگر تکرار کنید به صفحه جستجوی پیشرفته مجلات مراجعه کنید.
درخواست پشتیبانی - گزارش اشکال