به جمع مشترکان مگیران بپیوندید!

تنها با پرداخت 70 هزارتومان حق اشتراک سالانه به متن مقالات دسترسی داشته باشید و 100 مقاله را بدون هزینه دیگری دریافت کنید.

برای پرداخت حق اشتراک اگر عضو هستید وارد شوید در غیر این صورت حساب کاربری جدید ایجاد کنید

عضویت
جستجوی مقالات مرتبط با کلیدواژه

detection

در نشریات گروه گیاهپزشکی
تکرار جستجوی کلیدواژه detection در نشریات گروه کشاورزی
  • محدثه صادقی نیچکوهی، زهره مرادی*، محسن مهرور، ولی الله بابایی زاد

    ویروسهای گیاهی یکی از عوامل مهم محدودکننده تولید گیاهان مختلف می باشند. در این مطالعه وقوع سه ویروس مهم به نام های ویروس موزاییک خیار (cucumber mosaic virus, CMV)، ویروس موزاییک یونجه (alfalfa mosaic virus, AMV)، و ویروس رگبرگ روشنی پنیرک (malva vein clearing virus , MVCV)  در گیاهان پنیرک (Malva sylvestris) در استان گلستان مورد بررسی قرار گرفت. بدین منظور، در سال های 1401-1402، تعداد 20 نمونه برگی با علایم مشکوک به آلودگی ویروسی از فضای سبز و گلخانه های پرورش این گیاه جمع آوری گردید. نمونه ها توسط آزمون مولکولی Reverse transcription- polymerase chain reaction (RT-PCR) با آغازگرهای اختصاصی مربوط به هر ویروس مورد ارزیابی قرار گرفتند. هر سه ویروس ردیابی شدند و در مجموع بیشترین آلودگی مربوط به ویروس MVCV بود (نه نمونه)، پس از آن به ترتیب CMV (پنج نمونه) و AMV (دو نمونه) قرار داشتند. در بررسی مولکولی نمونه ها، ترادف ژن پروتیین پوششی (CP) جدایه MVCV مورد مطالعه (Ma2) بیشترین شباهت نوکلیوتیدی را با جدایه ایرانی IR1 (67/99 درصد) و بعد از آن با جدایه NAKT-NL از هلند (73/93 درصد) نشان داد. ترادف ژن CP جدایه CMV-IR-Ma بیشترین شباهت (100-99 درصد) را با جدایه های Ir-VM و Ir-WS از خراسان رضوی و جدایه Tsh از چین داشت. ترادف ژن CP جدایه AMV-IR-Ma دارای بیشترین شباهت نوکلیوتیدی (99-98 درصد) با جدایه های Ir-VM، Ir-WS و Ir-WS2 از خراسان رضوی بود. براساس اطلاعات نگارندگان، این اولین گزارش از آلودگی گیاه پنیرک به ویروسهای AMV و CMV در ایران با استفاده از آزمون RT-PCR می باشد. نتایج این تحقیق زمینه را برای کارهای تکمیلی از جمله بررسی آلودگی مخلوط ویروسها، ارزیابی خسارت، و میزان پراکندگی آنها فراهم می نماید.

    کلید واژگان: بیماری های ویروسی، پنیرک، توالی یابی، ردیابی
    Mohadeseh Sadeghi Nichkoohi, Zohreh Moradi *, Mohsen Mehrvar, Valiollah Babaeizad
    Introduction

    The genus Malva (family Malvaceae) includes species of herbaceous plants which are often pluriannual and very common in borders and boundaries of cultivated fields, making them proper reservoirs for plant pathogens. They are most commonly used as ornamental plants, although they may be used as a food resource and remedy for various diseases. Common mallow (Malva sylvestris) is the most important Malva species which is used as garden flower as well as widely recognized for food and medicinal purposes.  Malva sylvestris are reported to be affected by several viruses from different genera including malva vein clearing virus (MVCV, Potyvirus), alfalfa mosaic virus (AMV, Alfamovirus), malva-associated soymovirus 1 (MaSV1, Soymovirus) cucumber mosaic virus (CMV, Cucumovirus), and cotton leaf curl Gezira virus (CLCuGeV, Begomovirus). In this study, we attempted to identify important viruses infecting mallow plants and compare mallow isolates with other sequences in the GenBank.

    Materials and Methods

    In 2022-2023, twenty samples of mallow plants with viral-like symptoms on the leaves were collected from the urban landscape of Golestan province. Total RNA was extracted by DENAzist Total RNA Isolation Kit from fresh, infected mallow leaves. All samples were analyzed by RT-PCR with specific primer pairs for the detection of CMV, AMV, and MVCV. The amplified fragments in expected size of coat protein (CP) gene of each virus were visualized under UV light in agarose gel after electrophoresis, then amplified fragment of one isolate of each virus was bi-directionally sequenced. Obtained sequences were compared to data available in GenBank. The phylogenetic trees of viruses were constructed based on the nucleotide sequences of the coat protein gene using the neighbor-joining method by MEGA11.

    Results and Discussion

    All three viruses were detected in some symptomatic samples collected from Golestan province. The most typical symptoms in positive samples were mosaic, vein clearing, and leaf malformation. Of a total of 20 sampled plants, MVCV, CMV and AMV were detected by RT-PCR in nine, five and two samples, respectively. An amplicon of each virus was selected and sequenced in both directions. BLASTn analysis of the sequenced data confirmed that the PCR-amplified fragments belonged to MVCV, AMV, and CMV. Phylogenetic analysis based on the nucleotide sequence of CP gene of MVCV (n=21) including Iranian and GenBank isolates showed that all isolates are divided into six groups: G1 to G6. All Iranian isolates along with the isolate from the Netherlands were placed in group G5. The phylogenetic tree placed the CMV sequences (n=51) into two distinct phylogroups I and II; the obtained isolate CMV-IR-Ma clustered together with isolates from Iran, Netherlands, South Korea, Japan, China, Hungary, Australia, France and the USA into group II. According to the results of this study, AMV isolates (n=17) can be divided into two groups, I and II. Group I which includes isolates from Canada, China, Italy, Spain, Argentina, Australia and the USA, was divided into six subgroups. The obtained isolate AMV-IR-Ma was clustered in subgroup IB with a Chinese isolate (HZ) and forms a common branch with isolates (Ir-VM, Ir-WS, and Ir-WS2) from Iran. This is the first report of mallow (Malva sylvestris) infection with CMV and AMV in Iran using RT-PCR. In addition, mixed infection with two (MVCV+CMV and MVCV+AMV) or all three viruses (MVCV+CMV+AMV) was also confirmed in some samples. The phylogenetic trees showed that most of the viral isolates were not grouped according to their geographic locations. This suggests the dissemination and spread of these viruses through infected seeds. In Iran, M. sylvestris is a common weed found in fields, waste grounds, roadside verges and gardens. Considering the potential non-persistent aphid transmission as well as mechanical transmission, virus-infected mallows can act as a natural reservoir, thereby posing a threat to other ornamental plants and crops. Since the studied viruses were not detected in the other symptomatic plants, the observed symptoms can be caused by physiological disorders such as nutrient deficiencies, the presence of different viral strains, or other unknown and undetected viral species.

    Conclusions

    This study provides new knowledge on the diversity and molecular characteristics of viruses in mallow plants (M. sylvestris) affected by the viral disease. The information obtained from this study can be helpful in improving management strategies for disease caused by these viruses in Iran. Albeit M. sylvestris is a host of these viruses, but more comprehensive research on other viral species that may infect this plant need to be conducted. Weed management could be an effective way to eliminate inoculum sources of these viruses.

    Keywords: Viral diseases, Mallow, Sequencing, Detection
  • کبری مسلم خانی*، فاطمه خلقتی بناء، محمد محمدی، جهانبخش حسین نژادیان، فرشید حسنی، شمس الله نیکجه فراهانی، کمال الدین عباسی

     سالانه بیش از 300 محموله بذری سیب زمینی در سیستم رسمی کنترل و گواهی بذر کشور با هدف کاهش عوامل بیماریزای سیستمیک و تجمعی، از نظر آلودگی به ویروس های مهم سیب زمینی مورد آزمون قرار می گیرند. در این فرآیند درستی، حساسیت، اختصاصیت و سرعت روش تشخیصی برای صدور گواهی به موقع و صحیح از اهمیت بسیاری برخوردار است. در پژوهش حاضر کارایی استفاده تلفیقی از روش کشت تک جوانه و روش های مولکولی مبتنی بر RT-PCR برای ردیابی آلودگی ویروس وای سیب زمینی (PVY) در آزمون تعداد زیاد نمونه های بذری مورد بررسی قرار گرفت. نتایج این تحقیق نشان داد حساسیت، دقت و حتی سرعت ارزیابی توده های بذری با روش های مبتنی بر RT-PCR در مقایسه با روش سرولوژیکی ELISA افزایش می یابد. بهره گیری از روش RT-PCR در ردیابی ویروس PVY ، دارای دقت تشخیصی یک نمونه آلوده در نمونه ترکیبی حاصل از 50 بوته بوده در حالی که توانایی روش  ELISA به میزان یک دهم این قابلیت بود و این روش قادر به ردیابی یک نمونه آلوده در نمونه ترکیبی حاصل از پنج نمونه انفرادی بود. همچنین به دلیل دقت بسیار بیشتر آزمون های مبتنی بر RT-PCR صدور گواهی نادرست برای طبقه بذری مشاهده نشد، حال آن که بر اساس نتایج ELISA حدود شش درصد از توده های بذری مورد آزمون به جای طبقه گواهی شده به دلیل عدم توان ردیابی غلظت کم ویروس به اشتباه در طبقه مادری گواهی شدند. بر اساس استانداردهای ملی حداکثر آلودگی مجاز به PVY در پایین ترین طبقه بذری چهار درصد است که همین موضوع قابلیت اجرایی شدن این سیستم را با هزینه های قابل قبول (حداکثر با ارزیابی پنج زیر نمونه) فراهم می آورد.

    کلید واژگان: توده بذری، سیب زمینی، ردیابی، گواهی و ویروس
    Kobra Moslemkhani *, Fatemeh Khelghatibana, Mohammad Mohammadi, Jahanbakhsh Hosseininejhadian, Farshid Hassani, Shamsollah Nikjeh Farahani, Kamaleddin Abbasi

     In order to minimize the systemic infection in potato seed tubers, annually more than 300 potato seed lots are subjected to laboratory testing for potato viruses in the national potato seed certification system. The accuracy, sensitivity, specificity and speed are of the most important criteria for a diagnostic method to be employed in seed certification laboratory testing procedure. In this study the efficiency of using two methods including single sprout culture and RT-PCR as an integrated diagnostic method was investigated for detecting Potato Virus Y in potato seed samples. According to the present study, RT-PCR performance in Potato Virus Y detection was better than ELISA in terms of sensitivity, accuracy and time saving. RT-PCR successfully detected one infected sample in a combined sample consists of 50 individual samples while ELISA enabled to detect one infected sample in a much smaller combined sample consists of only five subsamples. Moreover because of ELISA retractions to detect low virus concentration and its false negative result, about six percent potato seed lots were incorrectly labeled basic seeds instead of certified seeds. Considering the maximum permissive virus infection percent in national potato seed standards (4% for the lowest seed class) and the maximum required subsamples to be tested (5 subsamples), using RT-PCR method in potato seed certification is economically recommended.

    Keywords: Certification, detection, Potato, Seed lot, Virus
  • ساره حیدرپناه، رسول رضایی*، سید محسن تقوی، فریبا قادری

    شانکر باکتریایی مرکبات یک بیماری مهم اقتصادی در بسیاری از کشورهای نواحی گرمسیری و نیمه گرمسیری به شمار می آید که توسط باکتری Xanthomonas citri subsp. citri ایجاد می شود.. چندین پاتوتیپ از بیمارگر توصیف شده است که براساس منشا جغرافیایی، دامنه میزبانی و همچنین برخی ویژگی های ژنوتیپی متمایز شده اند. در سال زراعی 1395، نمونه هایی از برگ، میوه و سرشاخه های درختان لیموترش با علایم شانکر باکتریایی مرکبات از استان کهگیلویه و بویراحمد جمع آوری گردید. باکتری عامل بیماری با روش های رایج از بافت های آلوده جداسازی و براساس آزمون های بیوشیمیایی شناسایی ابتدایی و بیماری زایی سویه ها نیز روی برگ های لیموترش اثبات شد. با توجه به علایم بیماری، خصوصیات فنوتیپی، آزمون بیماری زایی، آزمون پی سی آر با استفاده از آغازگرهای اختصاصی و توالی یابی قسمتی از ژن هیستیدین کیناز باکتری مذکور به عنوان Xanthomonas citri subsp. citri تشخیص داده شد. این نخستین گزارش از وجود این بیماری در استان کهگیلویه و بویراحمد می باشد.

    کلید واژگان: بیمارگر باکتریایی، بیماری زایی، ردیابی
    Sareh Heydarpanah, Rasool Rezaei *, Seyed Mohsen Taghavi, Fariba Ghaderi

    Citrus bacterial canker is an economically important disease in many tropical and subtropical countries and caused by Xanthomonas citri subsp. citri. Several pathotypes of this pathogen have been described that primarily distinguished by their geographical origin, host range and certain genotypic characteristics Leaves, fruits and twinges samples of ‘Mexican 'lime, with bacterial canker symptoms were collected from Kohgiluyeh and Boyer-Ahmad province in 2012. The bacterial strains were isolated from infected tissues using classic methods and primary identification of bacterial isolates was performed based on phenotypic characterization. Pathogenicity of isolates was approved on leaves of Mexican lime. Based on the disease symptoms, phenotypic and pathogenicity tests, PCR test by using specific primers and sequencing data of histidine kinase gene, the isolates were identified as Xanthomonas citri subsp. citri. This is the first report of the disease and the causal bacterium in Kohgiluyeh and Boyer-Ahmad province.

    Keywords: Bacterial pathogen, pathogenicity, Detection
  • وحید رومی*، مونا غزل، کادریه چاگلایان
    Vahid Roumi*, Mona Gazel, Kadriye Caglayan

    We investigated the presence of Hop stunt viroid (HSVd) in apple samples, showing dappling fruit symptoms, in the Maragheh area (Northwest Iran) by means of RT-PCR. The viroid was detected only in leaves collected from symptomatic trees and a 298bp amplicon (IR-Gala) was directly sequenced in both directions. Multiple sequence alignment and Blast analyzes revealed that IR-Gala isolate shares the highest identity with grapevine isolates from Brazil and China. Amongst Iranian isolates of HSVd available in the GenBank, this isolate had the highest identity with grapevine isolate of HSVd from Maragheh region. In Phylogenetic analysis by MrBayes, IR-Gala was clustered with grapevine isolates from Brazil, China and Iran and may suggest that HSVd-apple isolate could be originated from grapevine.

    Keywords: Detection, Apple, HSVd, Viroid, Iran
  • مرتضی گل محمدی *
    بیماری لکه سبز مرکبات (گرینینگ) توسط سه گونه باکتری به نام های Candidatus Liberibacter asiaticus، Ca. L. africanus و Ca. L. americanus ایجاد می شود. دو گونه پسیل مرکبات به نام های پسیل آسیایی Diaphorina citri و پسیل آفریقایی Trioza erytreae باکتری عامل بیماری را منتقل می کنند. علاوه بر پسیل، از طریق منابع تکثیری آلوده و استفاده از پیوندک آلوده نیز منتقل می شوند. به منظور ردیابی عامل این بیماری، نمونه های برگی و میوه های مشکوک به آن از جنوب کرمان جمع آوری گردید. در 12 نمونه از 48 نمونه بررسی شده، وجود بیماری تایید شد. توالی یابی محصول پی سی آر (ناحیه ریبوزومی) به طول 1077 جفت باز و مقایسه آن با استرین کنترل مثبت استاندارد و همچنین تولید دو قطعه 640 جفت باز و 520 جفت بازی این ناحیه با هضم آنزیمی توسط XbaI نشان داد که عامل بیماری لکه سبز مرکباتCandidatus Liberibacter asiaticus (تیپ آسیایی) است. جدایه های مورد بررسی در این مطالعه با وجود بروز علایم متفاوت، با یکدیگر و با جدایه استاندارد قرابت کامل نشان دادند.
    کلید واژگان: پی سی آر، تشخیص، تیپ آسیایی، Candidatus Liberibacteri asiaticus
    Morteza Golmohammadi *
    Introduction
    HLB (Huanglongbing ex greening) caused by three species of bacterium Candidatus Liberibacter asiaticus, Ca. L. africanus and Ca. L. americanus, is the most important citrus disease over the globe. The causal agent is transmitted by two psyllids Diaphorina citri and Trioza erytreae and infected bud woods. The causal agent of HLB disease was identified as a phloem-restricted, Gram-negative bacterium belonging to a new genus in the α-Proteobacteria subdivision. In Asia, the pathogen of HLB was categorized as the Candidatus Liberibacter asiaticus transmitted by the Asian citrus psyllid (Diaphorina citri). This was also reported in the south of Iran over 2000. Diagnosis of HLB disease can be difficult under field conditions when relying on visual surveys. This is due to its low concentration in its citrus hosts and the nonspecific nature of HLB symptoms, similarity of its symptoms to micronutrient deficiency such as zinc, magnesium, and iron and virus-like disease symptoms such as stubborn caused by Spiroplasma citri. Therefore, distinguishing causal agents of similar symptoms such as nutritional or stress related symptoms from HLB disease needs a robust procedure. Many detection methods have been used to detect Candidatus Liberibacter spp. including biological indexing (grafting and vector), electronic microscopy (EM), DNA probe specific to the bacterium, enzyme- linked Immunosorbent assay (ELISA). However, TEM methods are less practical, because ultra-thin sectioning is tedious and requires expensive equipment. Transmission tests are of limited value due to the latency and the long incubation period in insect and plant. Development of conventional polymerase chain reaction (PCR) test has great advantages of analyzing the bacterium at genetic level. The objective of this study was the detection of HLB in symptomatic citrus plants based on conventional polymerase chain reaction assay (PCR) in the south of Iran and the comparison of Iranian strains with other strains on the globe.
    Materials and Methods
    In order to detect, identify and characterize the diseases, leaf and fruit samples were collected from some suspected sites situated in the southern Kerman. Samples were stored in plastic bags and transferred into the laboratory and conserved at low temperature (60C) before DNA extraction. Total DNA was extracted from symptomatic samples on the basis of the method/protocol of Murray and Thompson (1980) with minor modifications. Briefly, 5 to 10 symptomatic leaves were washed with sterile water and dried on paper. The leaf midrib tissue derived from field plants was cut out by sterile scalpel and CTAB buffer added with addition of B-mercaptoethanol. The extract was transferred to a new tube and incubated at 65 0c for 15min. The other steps were conducted according to the original protocol. Existence of pathogen in samples was confirmed using PCR with primers A2 / J5 and OI1 / OI2c.
    Results and Discussion
    The PCR products were analyzed by gel electrophoresis using a 1% agarose in TBE buffer (Tris base, boric acid and 0.5M EDTA [pH 8.0]) and stained with ethidium bromide. Gel was visualized and analyzed by the GEL documentation.12 of 48 samples amplified with primers above and the disease was confirmed. By sequencing of PCR products with length of 1077 bp and comparison with the strains positive control, also production two fragments of 640 bp and 520 bp resulting from the digestion with XbaI PCR products, the agent of disease was found to be Candidatus Liberibacter asiaticus. The agent showed 100% homology with standard HLB Asiatic type. BLAST analysis showed that the nucleotide sequences obtained for the ribosomal protein (GenBank Accessions No. GN 049632) had 100% identity with sequences of ‘Ca. L. asiaticus’ from China (DQ431997), Taiwan (AB555707), Indonesia (AB480102), Florida (CP001677), and Brazil (AY91933). The Asian vector of HLB, Diaphorina citri was reported in 2000, therefore, the diseases might be distributed in other areas in the southern Iran. Thus, detection of HLB disease in young citrus plants is important to prevent a widespread outbreak of this disease. The results also showed that Iranian strain belongs to Asian type of Liberibacter and nominated Candidatus Liberibacter asiaticus. In the southern Iran, Diaphorina citri with high ability to spread the Candidatus Liberibacter asiaticus is found in most of citrus cultivating areas which implies a high risk of rapid dissemination. Therefore, the survey of the disease by an accurate and sensitive method is recommended for the disease detection in new areas and eradication of infected trees.
    Keywords: Asiatic type, Detection, Candidatus Liberibacter asiaticus, PCR
  • کبری مسلم خانی*، فرشید حسنی، اسماعیل نصرالهی آذر، فاطمه خلقتی بنا
    Cobra Moslemkhani*, Farshid Hassani, Esmaeil Nasrollahi Azar, Fatemeh Khelgatibana
    Spectroscopy in visible and part of near infrared region was assessed as a non-destructive technique for the detection of plants infected with Potato virus Y (PVY). The aim of our research was to recognize spectral signatures that indicate PVY infected plants. In this assay, we studied spectral reflectance of potato leaves showing different PVY symptoms in cultivars Agria and Milva. Virus titer of leaves that showed different disease symptoms, were estimated using enzyme-linked immune sorbent assay. The means of spectral data obtained from different leaves in each experimental plant were used for spectral analysis. Analyses showed that spectral region in 900-1100nm was markedly sensitive to the PVY infection and could be useful for developing a good spectral signature for detection of the infection. Based on the X loading weights obtained from principal component analysis (PCA), sensitive wavelengths were screened, some wavelengths in this region have most positive or negative loading and based on linear discriminant analysis, they could discriminate infection status with high accuracy. The reflectance variation in this region is related to changes in cell structure and water activity due to viral infection. Results indicate that spectroscopy has a suitable potential to detect virus-infected plants; which could be further developed for more accurate potato field inspection aimed at controlling the spread of viral infection.
    Keywords: detection, non-destructive, PVY, spectra, virus
  • وحید رومی *
    در تابستان سال های 1395 و 1396 تعداد 73 نمونه با علائم مشابه با ویروئید فرورفتگی میوه سیب از ارقام گالا و رد دلیشیز منطقه ی مراغه جمع آوری شد. RNA کل از پوست ساقه و برگ نمونه های جمع آوری شده حاوی علایم لکه های فرورفته و خال های زرد با حاشیه نامنظم روی پوست میوه، استخراج گردید و با استفاده از آغازگرهای اختصاصی ژنوم کامل ویروئید به طول 307-306 جفت باز با آزمون RT-PCR تکثیر و ترادف 10 نمونه تعیین گردید. جستجوی ترادف ها با BLASTn و هم ردیف سازی آنها با ترادف های مربوطه در بانک ژن نشان داد که جدایه های مورد مطالعه دارای بیشترین و کمترین یکسانی ترادف به میزان 100 و 4/74 درصد بترتیب با رس شمارهای EF088662 (ایتالیا) و KF788291 (ایتالیا) می باشند. بیشترین تفاوت نوکلئوتیدی در بین نواحی CCRو TR قرار داشتند. آنالیز فیلوژنتیک با روش حداکثر احتمال نشان داد که جدایه های ایرانی به همراه جدایه ها و واریانت های گزارش شده از ایتالیا در یک گروه قرار می گیرند.
    کلید واژگان: ردیابی، ویروئید، فرورفتگی میوه، سیب، ایران
    V Roumi *
    Abstract During years 2016-2017 surveys in apple orchards of Maragheh region, 73 samples of Gala and Red delicious cultivars with symptoms resembling to those caused by Apple dimple fruit viroid (ADFVd) were collected and subjected to two-step RT-PCR. Total RNA from stem bark and leaves of symptomatic plants showing dimple fruit and irregular yellow spots on fruit was extracted and full-length 306-307 base pairs genome of the isolates were amplified by using specific primer pairs. Ten amplicons with expected size were directly sequenced on both strands. Blast analysis and multiple sequence alignment of the sequences with those full-length ADFVd sequences deposited in GenBank, showed identities ranging from 74.4-100%. Iranian ADFVd isolates had the highest and lowest identity with two Italian isolates, accession Nos. EF088662 and KF788291, respectively. The region between CCR and TR domains was the most divergent. In phylogenetic analysis by maximum likelihood method, all Iranian isolates were clustered together with the Italian isolates and variants.
    Keywords: Detection, Viroid, Dimple fruit, Apple, Maragheh.
  • سیده معصومه ذو الانواری، رضا مستوفی زاده قلمفرسا، علی دادخدایی
    گونه ی بیمارگر گیاهی Phytophthora melonis از نظر ریخت شناختی به برخی گونه های بدون پستانک جنس Phytophthora به خصوص P. drechsleri شباهت دارد وبنابراین تفکیک این آرایه های هم گرا دشوار است. این پژوهش به منظور طراحی آغازگرهای اختصاصی P. melonis بر اساس ژنوم هسته ای و میتوکندریایی، بررسی اختصاصیت آن ها در برابر سایر گونه های همگرا، و بهینه سازی استفاده از این آغازگرها برای ردیابی P. melonis انجام شد. برای طراحی آغازگر های اختصاصی گونه ی P. melonis نه ژن هسته ای و چهار ژن میتوکندریایی از نظر تفاوت نوکلئوتیدی مناسب بودند، بنابراین سیزده آغازگر اختصاصی طراحی و خصوصیات آن ها بهینه سازی گردید. ردیابی P. melonis با استفاده از پنج جفت از آغازگر های اختصاصی در بافت مایه زنی شده ی گیاهان میزبان آن شامل خیار، خربزه، هندوانه، چغندر قند و پسته انجام شد. با استفاده از آغازگرهای طراحی شده در واکنش زنجیره ای پلیمراز تودرتو، تا سطح یک درصد مایه ی بیماری زا در خاک آلوده و زئوسپورهای بیمارگر تا غلظت 10 زئوسپور در میلی لیتر در آب آلوده ردیابی شدند. با بررسی اختصاصیت و حساسیت آغازگر های طراحی شده، کارامد ترین آن ها مجموعه ی ITS-M2 (ترکیب آغازگرهای ITS-MF1 و ITS-MR2) در نظر گرفته شد. دمای هم جوشی بهینه سازی شده برای این مجموعه 68 درجه ی سلسیوس بود. به نظر می رسد استفاده از واکنش زنجیره ای پلیمراز تودرتو با استفاده از مجموعه ی ITS-M2 به همراه آغازگر های عمومی ITS4 و ITS6 در نقش آغازگر های خارجی در حدود 106 برابر حساس تر از واکنش زنجیره ای پلیمراز مستقیم است. آزمون زنجیره ای پلیمراز چندگانه ی طراحی شده، قادر به ردیابی هم زمان سه گونه ی بیمارگر شامل P. melonis، P. drechsleri و P. nicotianae بود.آزمایش ها نشان داد که آغازگر های طراحی شده ابزاری کارآمدی برای ردیابی P. melonis در بافت گیاه، خاک و آب آلوده هستند.
    کلید واژگان: اامیکوتا، آغازگر اختصاصی، پوسیدگی ریشه، ردیابی، شناسایی
    S. M. Zolanvari, R. Mostowfizadeh-Ghalamfarsa, A. Dadkhodaie
    The plant pathogen Phytophthora melonis is morphologically similar to some other non-papillate Phytophthora spp. especially P. drechsleri and therefore it is difficult to discriminate these convergent taxa. This study was performed to design specific primers based on nuclear and cytoplasmic genome, examine their specificity against other convergent species, and optimize the specific primers’ conditions to detect P. melonis. Nine nuclear and four cytoplasmic genes were appropriate to design thirteen specific primers based on their nucleotide polymorphism. PCR conditions were optimized. Phytophthora melonis were detected by specific primers in inoculated plants such as cucumber, watermelon, melon, sugar beet and pistachio. All specific primers detected pathogen in 1:100 (pathogen: soil) inoculated soil.Up to 10 zoospores per milliliter were detected using nested polymerase chain reaction. ITS-MF1 and ITS-MR2 (ITS-M2 set, from internal transcribed spacers of rRNA gene) were selected as the most efficient primers based on their specificity and sensitivity. The optimized annealing temperature for this primer set was 68 °C. It seemed that nested PCR by ITS-M2 primer set together withthe universal primers ITS6 and ITS4 as external primers is at least 106 times more sensitive than simple PCR. Multiplex polymerase chain reaction simultaneously detected the three cucurbits’ pathogens including P. melonis, P. nicotianae and P. drechsleri. This study showed that the designed primers could be effective tools for detection of P. melonis isolates from infected tissues, and infested water and soil.
    Keywords: detection, identification, Oomycota, root rot, specific primers
  • اطهر علیشیری، فرشاد رخشنده رو، غلامرضا صالحی جوزانی، مسعود شمس بخش
    بادنا ویروس یک انجیر (Fig badnavirus -1) متعلق به خانواده Caulimoviridae و جنس Badnavirus و یکی از شایع ترین عوامل ویروسی همراه با بیماری موزائیک انجیر در انجیرکاری های جهان می باشد. طی فصول زراعی سال های 1391 تا 1393، در مجموع تعداد 392 نمونه برگی علائم دار و بدون علائم ویروسی از انجیر کار های مختلف موجود در 9 استان کشور جمع آوری شد. نمونه ها توسط آزمون سرولوژیکی Dot Immunobinding Assay (DIBA) و با استفاده از آنتی سرم اختصاصی ویروس موزائیک انجیر مورد بررسی قرار گرفتند. وجود ویروس در نمونه های آلوده توسط آزمون های مولکولی مورد تایید قرار گرفت. برای این منظور، DNA کل از نمونه های آلوده استخراج و با استفاده از آغازگر اختصاصی برای ژن پروتئاز، قطعه ای به طول تقریبی 1055 جفت باز تکثیر شد. به منظور بررسی تنوع ژنتیکی جدایه ها، محصول پی سی آر نمونه های آلوده به FBV-1 توسط آنزیم EcoRI در آزمون RFLP مورد هضم آنزیمی قرار گرفتند. پس از مشخص شدن توالی نوکلئوتیدی منطقه تکثیر شده 9 جدایه FBV-1 مربوط استان های مختلف، توالی های با رس شمارهای KU314932-40 در بانک ژن ثبت شدند. نتایج همردیف سازی توالی ها نشان داد جدایه های ایرانی در هر یک از سطوح نوکلئوتیدی یا اسید آمینه ای به میزان 99-98% مشابه بودند. در بررسی تبارزایی بر مبنای توالی نوکلئوتیدی جدایه های مورد بررسی در دو گروه قرار گرفتند و جدایه های ایرانی مستقل از جدایه آمریکا در گروه مجزا قرار گرفتند. فیلوژنی بر مبنای توالی اسید آمینه درخت فیلوژنتیکی متفاوتی را نشان داد.
    کلید واژگان: ردیابی، بادنا ویروس یک انجیر، تبارزایی
    A. Alishiri, F. Rakhshandehroo, Gh. Salehi Jouzani, M. Shams, Bakhsh
    Fig badnavirus-1, a species of the genus Badnavirus in the family Caulimoviridae, is one the most prevalent viruses associated with the fig mosaic disease through in fig plantations worldwide. During the growing seasons of the year 2012-2013, a total of 392 asymptomatic and symptomatic leaf samples were collected from different fig orchards located in 9 provinces of Iran. Using the DIBA serological test and universal serum, samples were tested for the presence of fig mosaic disease. Following total DNA extraction from infected samples, an amplicon with a size about 1055bp was amplified using specific primer for FBV-1 protease gene. RFLP test was conducted with the PCR products of the FBV-1 infected samples and EcoRI enzyme to assess the genetic variation of infected isolates. Protease gene of nine representative FBV-1 samples from different provinces were sequenced and submitted in GenBank under the accession numbers KU314932-40. Blast analysis showed 98-99% identity between the Iranian isolates at the nucleotide and amino acid levels. Phylogenetic analysis on the basis of the nucleotide sequences of studied isolates categorized them into two different groups in which Iranian isolates grouped together in a separate group distinct from American isolate. Phylogeny on the basis of the amino acid sequence revealed a different phylogenetic tree. Totally, results of this study indicated the presence of different FBV-1 populations in Iran.
    Keywords: Detection, Fig badnavirus, 1, phylogeny
  • کبری مسلم خانی، ساره بقایی راوری، پژمان خدایگان
    توانمندی تشخیص و ردیابی صحیح فیتوپلاسماها از گیاهان، اهمیت به سزایی در کنترل موثر این عوامل و جلوگیری از گسترش آنها از طریق مواد گیاهی آلوده دارد. استخراج DNA به گونه ای که کمترین مواد ممانعت کننده و بیشترین میزان ماده ژنتیکی فیتوپلاسما حاصل گردد، در موفقیت آزمون واکنش زنجیره ای پلیمراز و صحت نتایج حاصل از آن تاثیرگذار است. در این تحقیق، مقایسه روش های مختلف استخراج DNA نشان داد که استفاده از روش مناسب، در کاهش واکنش منفی کاذب اهمیت دارد. اما حتی در روش موفق استخراج DNA مبتنی بر استفاده از ستون نیز واکنش های منفی کاذب هرچند به تعداد اندک اما به صورت پراکنده وجود دارد. این امر می تواند ناشی از غلظت پایین و پراکنش نامنظم سلول-های فیتوپلاسمایی در بافت های گیاه میزبان باشد. بر اساس نتایج حاصل از تعیین توالی قطعه تکثیر شده با ترکیب آغازگری P1/P7-R16F2n/R16R2، واکنش مثبت دروغین در برخی تکرارهای آزمون Nested PCR به دست آمد. به منظور کاهش آلودگی های متقاطع و اجتناب از واکنش های مثبت دروغین، آزمون Single Tube Nested PCR بهینه سازی گردید. علیرغم دستیابی به محاسن مختلف این روش از جمله سهولت اجرا، صرفه جویی در هزینه و زمان و همچنین توان ردیابی بیمارگر در غلظت های پایین، متاسفانه واکنش های مثبت کاذب در تعداد کمی از نمونه ها همچنان مشاهده شد. در مجموع نتایج حاصل از روش Nested PCR با یک ترکیب آغازگری و به تنهایی برای ردیابی و ارزیابی-های وسیع باغات و مزارع کفایت نمی کند و استفاده از ترکیبات پرایمری مختلف، تعیین توالی و یا هضم آنزیمی به منظور اجتناب از واکنش مثبت دروغین توصیه می گردد.
    کلید واژگان: چالش ها، ردیابی و واکنش زنجیره ای پلیمراز
    C. Moslemkhani, S. Baghaee Ravari, P. Khodaygan
    Introduction
    Phytoplasmas are phytopathogenic bacteria without cell walls that can be found in plant phloem, have been found associated with numerous diseases of plants worldwide. A sensitive and precise diagnostic test for detection of phytoplasma-infected plant is critical to avoid using infected planting material and dispersal of these agents. The detection of phytoplasma from plant tissues by PCR, requires using DNA extraction methods that extract high level phytoplasmas DNA with less plant inhibitors. Usually Phytoplasma diagnostics have been based on the 16S rRNA gene and the 16S–23S rRNA spacer region because universal primers that design for replication these regions could detect different groups of phytoplasmas but diagnostics based on these primers can be problematic, with occasional false positives, through amplification of some bacterial genomes that might be present in a plant sample. These primers also have sequence homology to chloroplasts and plastids and increase the risk of false positives so it is important to guard against false negatives and positive during such detection techniques.
    Materials And Methods
    Health and infected Lime samples with Candidatus phytoplasma aurantifolia were used respectively as negative and positive samples. DNA was extracted by the CTAB methods, SDS method, Fermentas DNA extraction kit, column based Method (Genet Bio genomic DNA isolation kit) and compared to remove inhibitors and reduced false negative reactions in nested PCR detection method. DNA samples were tested for phytoplasma infection by direct PCR using the universal phytoplasma primer pair P1/P7 and nested PCR using primer pairs P1/P7-R16F2n/R16R2 and P1/P7-fU5/rU3. The PCR products were sequenced and subsequent analysis using GenBank database information at the national center for biotechnology was employed.
    Results And Discussion
    Comparison of different DNA extraction methods indicated using suitable method can significantly reduce false negative reaction, but even in successful column-based DNA extraction method, false negative reactions were reported that were due to low phytoplasma concentration and irregular distribution within host tissues or could be caused by inhibitor presence in DNA samples. Based on results of sequencing, false positives were obtained sporadically, using primer pairs combination P1/P7- R16F2n/R16R2 that may be arising from cross over contamination or sequence homology with plant genome, so some primers can react probably with sequences of plant genome and false positives could be observed. Since false positives are also a major problem in PCR protocols, especially in nested PCR so single tube nested PCR (STNP) was optimized to avoid false positive reaction but regardless advantages of this method such as facility, cost and time effective and ability to detect low concentration of pathogen, false positive reactions were observed in a few samples. The advantage of STNP is that tubes do not have to be opened, so the risk of contamination minimized.
    Conclusion
    PCR-based techniques for phytoplasma detection, appears to be the method of choice because of their high sensitivity and specificity. Using suitable method for extraction of DNA from infected plant tissues are getting more critical for precise detection through increasing DNA quality and quantity. In the other hand confirmation of phytoplasma presence must be accomplished at least by RFLP analyses or different primer pair combination to avoid false positive detection.
    Keywords: Phytoplasma, Detection, Nested PCR
  • محمد ترکیان، رضا پوررحیم*، مژده ملکی

    سوسن (Lilium spp.)، از خانواده سوسن سانان (Liliaceae) از جمله گیاهان زینتی با اهمیت اقتصادی بالا می باشد که بیماری های ویروسی از مهم ترین عوامل محدود کننده تولید آن می باشند. در سال 1393، تعداد 76 نمونه با علایم مشکوک به آلودگی ویروسی شامل موزاییک، بدشکلی، سبزردی، کاهش رشد و نکروز از گلخانه های زینتی در استان تهران جمع آوری گردید. آلودگی این نمونه ها به ویروس موزاییک خیار (Cucumber mosaic virus-CMV) و ویروس موزاییک آرابیس (Arabis mosaic virus-ArMV) با استفاده از روش های بیولوژیکی، سرولوژیکی و مولکولی مورد بررسی قرار گرفت. بر اساس آزمون الایزا، 45 و 3 نمونه به ترتیب به CMV و ArMV و پنج نمونه دارای آلودگی توام این دو ویروس بودند. نتایج آزمون الایزا با روش بیولوژیکی و مایه زنی گیاهان محک مورد تایید قرار گرفت. همچنین با استفاده از روش مولکولی RT-PCR و به کارگیری آغازگر های اختصاصی، قطعات DNA مورد انتظار 1100 و 690 جفت باز به ترتیب مربوط به ناحیه ژن پروتیین پوششیCMV و ArMV  تکثیر گردید. به کمک روش RT-PCR و آغازگر های اختصاصی زیر گروه های I و II ویروس موزاییک خیار، آلودگی نمونه های لیلیوم به جدایه های زیر گروه I این ویروس تایید شد. برای ردیابی ویروس بدون علایم لیلیوم (Lily symptomless virus-LSV) و ویروس پیسک لیلیوم (Lily mottle virus-LMoV) از روش مولکولی RT-PCR و به کارگیری آغازگر های اختصاصی استفاده شد که آغازگر های LMoV منجر به تکثیر قطعه DNA به طول مورد انتظار حدود 650 جفت باز در چهار نمونه شدند. در هیچ یک از نمونه ها آلودگی با LSV ردیابی نگردید. این اولین گزارش از وقوع آلودگی به ویروس های ArMV، CMV و LMoV از لیلیوم در کشور می باشد. روش های ردیابی بهینه سازی شده در این تحقیق، در مدیریت این بیماری ها از طریق تشخیص و حذف منابع آلودگی در برنامه های تولید پیازچه های سالم نقش کاربردی بسیار مهمی دارد.

    کلید واژگان: لیلیوم، ویروس موزاییک خیار، ویروس پیسک لیلیوم، ویروس موزاییک آرابیس، ردیابی
    Mohammad Torkian, Reza Pourrahim, Mojdeh Maleki

    Lily (Lilium spp.) from Liliaceae familiy is considered as one of the most important ornamental plants with high economic value. Virus diseases are shown to be as main limiting factor in lily production. During a survey in 2015, a total of 76 symptomatic samples showing mosaic, deformation, chlorosis, reduced growth, necrosis and decline were collected from lily growing greenhouses in Thehran province. Samples were tested for Cucumber mosaic virus (CMV) and Arabis mosaic virus (ArMV) using ELISA, biological and molecular methods. ELISA results showed that 45 and 3 samples were infected with CMV and ArMV, and 5 samples were co-infected with the both viruses. The virus infections were confirmed using biological inoculation tests. CMV and ArMV infection were also tested by RT-PCR method using specific primers which resulted to amplification of 1100 and 690 bp DNA fragments, respectively. CMV lily isolates were confirmed to belong to CMV subgroup I using specific primers in RT-PCR assay. Presence of Lily symptomless virus –LSV and Lily mottle virus-LMoV were tested by RT-PCR assay using specific primers which resulted in amplification of the expected 650 bp DNA product corresponding to CP gene region of LMoV, but there was not any DNA amplifications related to LSV. This is the first report on occurrence of ArMV, CMV and LMoV infections on lily in Iran. Detection of virus infection sources using the optimized methods in this study is a crucial practical approach for virus management in healthy lily bulb production in the country.

    Keywords: Lilium, CMV, LMoV, ArMV, detection
  • محسن رجاییان، محمود رضا کریمی شهری*، مهدی پیرنیا، ویدا دهواری، نگار قزل سفلو
    یکی از مهم ترین و مخرب ترین بیماری های قارچی انگور بیماری اسکا یا زوال مو می باشد. این بیماری باعث کاهش رشد، کاهش محصول و در نهایت مرگ گیاه می گردد. در طی تابستان 1389 از تاکستان های شهرستان بجنورد و حومه ی آن نمونه های مختلفی از تنه شامل: قطعات تنه دارای علایم پوسیدگی سفید، دارای علایم پوسیدگی قهوه ای، دارای علایم نقاط قهوه ای رنگ و فاقد علایم ظاهری نمونه برداری شد. هدف از اجرای این تحقیق ردیابی عوامل قارچی مرتبط با بیماری اسکا در داخل تنه انگور با استفاده از آغازگرهای اختصاصی و همچنین جداسازی آنها به روش کلاسیک و مقایسه آن با روش ملکولی بود. جهت ردیابی عوامل اسکا از آغازگر های عمومی نواحی دی-ان-آریبوزومی و آغازگرهای اختصاصی استفاده شد. نتایج حاصل از PCR با آغازگر های اختصاصی در این تحقیق به صورت مشاهده ی باند های bp550، bp360 و bp415 به ترتیب برای قارچ های F. mediterranea، Pa. chlamydospora و spp. Phaeoacremonium بود. نتایج حاصله نشان داد که در مجموع گونه ی Pa. chlamydospora از فراوانی بیشتری برخوردار است و در اکثر نمونه های مورد بررسی این گونه با درصد بالاتری نسبت به سایر عوامل قارچی جداسازی و ردیابی گردید و کمترین فراوانی نیز مربوط به گونه ی F. mediterranea بود که فقط در چوب های دارای علایم پوسیدگی سفید ردیابی گردید. بنابراین آغازگر های اختصاصی مورد مطالعه می تواند در سالم سازی خزانه های انگور عاری از بیماری اسکا مورد استفاده قرار گیرد.
    کلید واژگان: انگور، بیماری اسکا، ردیابی، دی، ان، آریبوزومی
    M. Rajaiyan, M. R. Karimi Shahri*, M. Pirnia, V. Dehvari, N. Ghezel Sefloo
    One of the most significant and destructive grapevine diseases is Esca which is caused by several fungal species. Trunk disease causes stunted growth، reduced yield، and ultimately، vine death. For this reason، during the summer 2011، infected samples were collected from Bojnourd (North Khorasan province) vineyards. Infected trunk samples were acquired that they were showing white and brown rots، dark brown spots and also samples without apparent symptoms. The aims of this work were، firstly، to apply species –specific primers for detecting fungal agents associated with Esca disease of grapevine; and comparing this method to the classical ones، and secondly، to detect frequency of each pathogenic agent using molecular and classical methods. In molecular method، species-specific primers which designed based on ITs region of rDNA were used to detect fungal agents of the Esca disease. They yielded a single amplicon of 550 bp، 360bp and 415 bp for F. mediterranea، Pa. chlamydospora and Phaeoacremonium spp. respectively. Results showed that the maximum frequency of incidence was related to P. chamydospora and Phaeoacremonium spp was in second. The lowest incidence frequency rate was related to F. mediterranea which was observed only in sample with white rot symptoms. Primers defined here can be used in the nursery sanitation program to produce plant free of Esca disease.
    Keywords: ESCA, Detection, ITs region, Grapevine
  • مجید شاهی بجستانی، بهروز جعفرپور، محسن مهرور
    به منظور شناسایی ویروس کوتولگی زرد پیاز در بهار و تابستان 1389 از مناطق عمده پیاز کاری استان خراسان نمونه برداری صورت گرفت. بدین منظور نمونه برداری تصادفی از مزارع حومه شهرستان های مشهد، چناران، قوچان، تربت حیدریه، نیشابور، بردسکن، گناباد، فریمان، فاروج، شیروان، بجنورد و آش خانه به عمل آمد. نمونه های برگی با علائم موزائیک، زردی، رگوز و پیچیدگی همراه با کوتولگی غده های پیاز جمع آوری شدند. آلودگی نمونه های فوق با استفاده از آزمون سرولوژیک DAS-ELISA و آغاز گرهای طراحی شده برای تکثیر ژن پروتئین پوششی (CP) در واکنش RT-PCR مورد ارزیابی قرار گرفتند. بدین منظور استخراج RNA از نمونه های آلوده با استفاده از کیت آماده(plus)RNXTM انجام شد و به دنبال آن آزمون RT-PCR جهت ساختن cDNA و سپس آزمون PCR انجام گردید. الکتروفورز محصول PCR در ژل آگارز 5/1 %، قطعه تکثیر شده bp291 مربوط به ژن کامل CP را در تمام نمونه های مورد آزمایش نشان داد. قطعه تکثیر شده جهت توالی یابی ارسال و تائید شد. همچنین آلودگی با روش سرولوژیک تائید گردید. همچنین صحت بیماری زایی ویروس نیز در شرایط گلخانه بر روی سه گونه از گیاه سلمه مورد بررسی قرار گرفت. نتایج به دست آمده نشان داد که مزارع حومه چناران، گناباد و نیشابور به این ویروس آلوده می باشند و در مزارع سایر شهرستان ها آلودگی با درصد بسیار ضعیف مشاهده می شود یا هیچ آلودگی مشاهده نگردید.
    کلید واژگان: ویروس کوتولگی زرد پیاز، شناسایی، دامنه میزبانی، DAS، ELISA، RT، PCR
    M. Shahi Bajestani, B. Jafarpoor, M. Mehrvar
    In order to detect Onion yellow dwarf virus in Khorasan province in Iran، onion samples from major onion growing regions where collected in spring and summer 2010. To determine the distribution of the virus، samples were randomly taken from onion fields in vicinity of Mashhad، Chenaran، Quchan، Torbate Heydarye، Neyshabur، Bardaskan، Gonabad، Fariman، Faruj، Shirvan، Bojnourd and Ash khane have been tested by DAS- ELISA method. Leaf samples showing mosaic، yellowing، rolling symptoms and complexity associated with dwarf onion bulbs glands were collected. Infection of samples with Onion yellow dwarf virus were confirmed using DAS-ELISA and RT-PCR tests. Total RNA was extracted from infected samples using RNX ™ (plus) kit. To perform RT-PCR test cDNA was made and then PCR test was carried out. 1. 5% Agarose gel electrophoresis of PCR products resulted in a fragment of 291 bp from CP of the virus. Amplified fragment were then sequenced. The virulence of the virus in greenhouse on three Chenopodium species (Chenopodium album، C. quinoa، C. amaranticolor) was confirmed. The results showed that onion field in Chenaran، Gonabad and Neyshabour infected with Onion yellow dwarf virus but no infection in other places.
    Keywords: Onion yellow dwarf virus, Detection, host range, DAS, ELISA, RT, PCR
  • کبری مسلم خانی، راحله شهبازی
    Spiroplasma citri عامل بیماری استابورن از عوامل بیماریزای مهم در صنعت مرکبات ایران است. یکی از مهمترین روش های کنترل این بیماری معرفی درختان مادری، مواد تکثیر شونده رویشی و نهالستان های سالم به منظور ممانعت از استقرار منابع آلوده در باغات تازه احداث می باشد. در همین راستا توان ردیابی دو روش تشخیصی ELISA با استفاده از آنتی بادی پلی کلنال و PCR با استفاده از سه جفت آغازگر مختلف مقایسه و بررسی گردید. نتایج، عدم کارامدی روش ELISA در تشخیص آلودگی های پنهان (در گیاهان فاقد علائم بیماری) و تیتر های پایین بیمارگر را نشان داد و استفاده از این روش تشخیصی در سیستم گواهی سلامت نهال، اشکالات قابل تاملی از جمله واکنش منفی دروغین را به همراه خواهد داشت. آزمون PCR و مشخصا آغازگرP89f/r در مقایسه با دو جفت آغازگر P58-1f/5r و P58-6f/4r در خصوص استرین های ایرانی اعم از جدایه های جنوب و شمال ایران با موفقیت آلودگی را در غلظت های بسیار پایین و در فصول معتدل سال ردیابی می نماید. در این بررسی با استفاده از آزمون PCR و آغازگر P89f/r، از بین 350 نهال از ارقام مختلف مرکبات، 6/4 درصد آن ها که فاقد علائم تیپیک بیماری بودند، آلوده تشخیص داده شدند.
    کلید واژگان: Spiroplasma citri، ELISA، PCR، مرکبات، تشخیص
    C. Moslemkhani, R. Shahbazi
    Spiroplasma citri, the causal agent of stubborn disease has become one of the destructive pathogen of citrus industry in Iran. One of the most important strategies for control of stubborn disease is using S. citri-free mother trees, propagative material and citrus nurseries and disease avoidance in new orchards. In this way, the efficiency of the standardized ELISA with poly clonal antibody and PCR protocol with three different primer pairs was assessed. The results revealed that ELISA was not able to detect low titre of infection (in symptomless samples) so using ELISA techniques in certification system was not recommended and has significant problem such as false negative reaction. PCR method and specially P89f/r primers in compare with two other primers P58-1f/5r and P58-6f/4r was able to detect low titre of north and south strains of pathogen in moderate seasons. Out of a total 350 samples screened for presence of S. citri by the PCR method only 4/6 % showing positive results in symptomless samples.
    Keywords: Spiroplasma citri, Detection, PCR, ELISA, Citrus
  • حسین علایی، فاطمه رستمی
    بیماری بوته میری خیار از جمله عوامل محدود کننده کشت خیار که باعث خسارت قابل توجهی در گلخانه های تجاری می شود. به منظور شناسایی عوامل بیماری زا، نمونه برداری و جداسازی عامل بیماری طی سال های 1388 تا 1390 از گلخانه های تجاری خیار در رفسنجان انجام شد. تعداد 23 جدایه پیتیوم با استفاده از محیط کشت انتخابی جداسازی و بیماریزایی جدایه ها روی گیاهچه های خیار ارزیابی و اثبات گردید. شناسایی بیمارگر بر اساس ریخت شناسی پرگنه، ویژگی های میکروسکوپی و روش مولکولی انجام شد. بر اساس ویژگی های میکروسکوپی گونه P. aphanidermatum شناسایی گردید. توالی نوکلئوتیدی دی ان ای ناحیه ترانوبسی شونده داخلی ریبوزومی (rDNA-ITS) جدایه های انتخابی تعیین و به بانک ژن ارسال گردید. جستجوی تشابه با GenBank-BLAST با استفاده از توالی ناحیه rDNA-ITS نشان داد که P. aphanidermatum ثبت شده در بانک ژن با شماره ثبت AB355599 شبیه ترین توالی (بیش از99درصد تشابه) به جدایه به دست آمده می باشد. شناسایی و ردیابی مولکولی P. aphanidermatum از بافت آلوده بر اساس تکثیر قطعه اختصاصی از ناحیه rDNA-ITS با استفاده از آغازگراختصاصی Paph54F/ITS2 انجام و اختصاصیت و حساسیت آغازگر بررسی شد. نتایج نشان داد که جفت آغازگر مزبور برای ردیابی بیمارگر P. aphanidermatum بسیار اختصاصی و قادر به تکثیر قطعه 200 جفت بازی می باشد. از طرفی قادر به ردیابی کمتر از fg200 از DNA خالص بیمارگر در PCR معمولی می باشد. استفاده از آغازگر طراحی شده زمینه ردیابی P. aphanidermatum از بافت، آلوده را فراهم می نماید و هیچ باندی در تکثیر با DNA به دست آمده از بافت خیار سالم دیده نمی شود.
    کلید واژگان: ردیابی مولکولی، واکنش زنجیره ای پلیمراز، استخراج دی، ان، ای، توالی یابی
    H. Alaei, F. Rostami
    Cucumber damping-off is a limiting factor in commercial greenhouse production. To determine the causal agents of disease, sampling and fungal isolation were performed during 2009 and 2011. A total of 23 isolates of Pythium sp. were obtained using selective media. Their pathogenicity was evaluated on cucumber seedlings under greenhouse conditions. All isolates were pathogenic. Morphological and molecular identifications of the isolates were performed. P. aphanidermatum was identified based on microscopic characteristics. The complete sequences of ribosomal DNA internal transcribed spacers regions of selected isolates were determined and submitted to GenBank. The GenBank-BLAST homology search revealed P. aphanidermatum as the most similar sequence (> 99% identity) with GenBank entry AB355599. PCR primers were designed for the identification of P. aphanidermatum in which had a unique ITS sequence. The PCR primer combination Paph54F/ITS2 was species-specific with no cross-reaction to other Pythium species or to soil borne cucumber fungal pathogens tested. The detection limit was as little as 200 fg pure genomic DNA. P. aphanidermatum could be detected in lesions of infected cucumber stem tissue. No signals were obtained from healthy cucumber tissue DNA.
    Keywords: DNA extraction, Sequencing, ITS, Conventional PCR, Detection
  • الهام یوسفی همدانی، بهرام شریف نبی، مسعود بهار
    قارچ Armillaria melleaعامل پوسیدگی ریشه و طوقه درختان دارای انتشار جهانی است و خسارت قابل توجهی را به دامنه وسیعی از درختان باغی، جنگلی و فضای سبز وارد می سازد. قارچ عامل بیماری می تواند به عنوان یک منبع آلودگی در زیر پوست باقی بماند و از سویی کنترل موثری علیه این بیماری وجود ندارد، بنابراین ردیابی بیمارگر از خاک و طوقه درختان در پیش بینی شدت آلودگی قارچی و جلوگیری از پراکنش به درختان مجاور اهمیت دارد. در این تحقیق به منظور دستیابی به یک روش حساس و سریع جهت ردیابی A. mellea در نمونه های خاک و چوب، نمونه برداری از اندام بارده قارچ، خاک و طوقه درختان انجام گرفت و پس از جداسازی عامل بیماری روی محیط کشت، مقایسه ای میان روش های مختلف ردیابی بیمارگر با استفاده از محیط های کشت نیمه انتخابی، گیاه تله و روش مولکولی صورت گرفت. مایه تلقیح بیمارگر برای دو جدایه A. mellea تهیه و به میزان سه درصد به خاک تلقیح گردید و سپس ردیابی بیمارگر با استفاده از سه روش محیط کشت، تله گذاری و nested PCR به طور همزمان، انجام گرفت. روش محیط کشت نیمه-انتخابی در ردیابی بیمارگر در دراز مدت کارایی نداشت. در روش تله گذاری از گیاه شمعدانی استفاده گردید که به مدت زمان طولانی جهت ردیابی بیمارگر از خاک نیاز داشت. براساس نتایج به دست آمده، روش nested PCR در ردیابی بیمارگر کارآمد تشخیص داده شد.
    کلید واژگان: ردیابی، Armillaria mellea، روش های کلاسیک، واکنش زنجیره ای پلیمراز
    E. Yosefi Hamedani, B. Sharifnabi, M. Bahar
    Armillaria mellea the causal agent of root and crown rot of trees has a universal distribution and causes extensive economic disease on a broad host range of trees in gardens, forests and urban environments. The pathogen can survive under the bark as inoculum and there is no effective control method against the disease, so pathogen detection from soil and wood is important to predict disease severity and prevent disease dispersal from one tree to another. To achieve a rapid and sensitive detection method for A. mellea in soil and wood, sampling was performed from fruiting bodies, soil and wood and after isolation of pathogen on culture media, comparison was done among different detection methods using a semi-selective medium, baiting and molecular methods. Inoculum was prepared for two isolates of A. mellea and was inoculated to soil. Pathogen detection was done with soil direct culture method, baiting and nested PCR simultaneously. The culture medium was not effective to detect pathogen in long-term period. In baiting method, Pelargonium hortorum was used as a baiting plant that required long time to detect pathogen. The results revealed that nested PCR is an efficient method for detection of A. mellea.
    Keywords: Detection, Armillaria mellea, Classical methods, PCR
  • رضا مستوفی زاده قلمفرسا
    گونه Phytophthora inundataبه تازگی توصیف شده و به علت خصوصیات ریخت شناختی و حداکثر دمای رشد غیرعادی، شناسایی آن دشوار است. این گونه با سایر گونه های بیمارگر گیاهی جنس Phytophthora که بدون پاپیل و گرماپسند هستند، اشتباه می شود. در این بررسی برای شناسایی P. inundata شیوه ای براساس واکنش زنجیره ای پلیمراز ساده و تودرتو ابداع شد. بدین منظور مجموعه ای از جدایه ها مربوط به میزبان های مختلف که نماینده تنوع موجود در توالی نواحی رمزگذار و فاقد رمز این گونه بودند، مورد بررسی قرار گرفت. براساس توالی های جداکننده نسخه برداری شده داخلی یک و دو و ژن 8/5 اس مربوط به دی ان ای ریبوزومی (آی تی اس)، ژن پروتئین مقاوم به شوک حرارتی 90، ژن های پروتئین پیوسته تریوزفسفات ایزومراز/گلیسرآلدئید سه فسفات دی هیدروژناز و هم چنین ژن پروتئین 60 اس ریبوزومی ال 10، برای گونه مذکور ده عدد آغازگر واکنش زنجیره ای پلیمراز اختصاصی طراحی گردید. برای ایجاد بیشترین اختصاصیت و کارآیی، دمای جفت شدگی و زمان گسترش برای هر جفت آغازگر بهینه سازی گردید. برای ارزیابی آغازگرها از 28 گونه دیگر فیتوفتورا که از نظر ریخت شناختی و مولکولی تایید شده بودند، استفاده شد. در اغلب موارد هیچ یک از مجموعه آغازگرها قادر به فزون سازی دی ان ای خالص سازی شده از گونه های Phytophthora غیرخودی نبودند. واکاوی-ها نشان داد که بهترین نامزد برای شناسایی جدایه های P. inundata مجموعه ITS-I1 می باشد که از ترکیب آغازگرهای ITS-IF1 و ITS-IF2 تشکیل شده است. دمای جفت شدگی بهینه برای این مجموعه 69 درجه سانتی گراد و بهترین زمان گسترش 40 ثانیه می-باشد. به نظر می رسد استفاده از واکنش زنجیره ای تودرتو با استفاده از مجموعه ITS-I1 به همراه آغازگرهای عمومی ITS4 و ITS6 به عنوان آغازگرهای خارجی حداقل 50 برابر حساس تر از روش سنتی است.
    کلید واژگان: Phytopthora inundata، Oomycota، توالی های جداکننده نسخه برداری شده داخلی (ITS)، شناسایی، ردیابی
    R. Mostowfizadeh, Ghalamfarsa
    Phytophthora inundata has been recently described and depicted as a ‘difficult’ taxon for identification due to its morphology and unusually high upper temperature limit for growth which has been mistaken for other non-papillate and high temperature tolerant plant pathogenic Phytophthora species. A simple as well as a nested-PCR based method was developed for the identification of P. inundata. A collection of isolates from different hosts representing diversity of species were examined for unique regions of coding as well as non-coding gene sequences. Based on internal transcribed spacers 1, 2 and 5.8S gene of rDNA (ITS), heat shock protein 90 gene (HSP), triosephosphate isomerase/glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase fusion protein (TIG), and 60S ribosomal protein L10 gene (RPL) ten PCR primers specific for P. inundata were designed. Annealing temperatures and extension times were optimized for each set of primers for maximum specificity and efficiency. To evaluate the specificity of the method, 28 morphologically and molecularly characterized Phytophthora species were tested. In most cases neither set of primers amplified purified DNA from these non-homologous Phytophthora species. Analysis showed that the best candidate for identification of P. inundata isolates is ITS-I1 set which is a combination of ITS-IF1 and ITS-IR1. The optimized annealing temperature for this set was 69 °C and the best extension time was 40 sec. It seems that nested-PCR by ITS-I1 set together with universal ITS6 and ITS4 as external primers is at least 50 times more sensitive than conventional PCR.
    Keywords: Phytophthora inundata, Oomycota, internal transcribed spacer of rDNA (ITS), identification, detection
نکته
  • نتایج بر اساس تاریخ انتشار مرتب شده‌اند.
  • کلیدواژه مورد نظر شما تنها در فیلد کلیدواژگان مقالات جستجو شده‌است. به منظور حذف نتایج غیر مرتبط، جستجو تنها در مقالات مجلاتی انجام شده که با مجله ماخذ هم موضوع هستند.
  • در صورتی که می‌خواهید جستجو را در همه موضوعات و با شرایط دیگر تکرار کنید به صفحه جستجوی پیشرفته مجلات مراجعه کنید.
درخواست پشتیبانی - گزارش اشکال